自贡动物实验外包病理组织切片 南京英瀚斯

大鼠心ji梗死模型

造模方法

10％水合氯醛(300mg/kg)腹腔注射麻zui大鼠；01),气道坏死糜lan、小气道阻塞发生率级气道平滑肌增sheng等指标显著高于6周组(P<。大鼠胸部剃毛备皮，取仰卧位，气管插管，小动物呼吸机辅助呼吸；腹腔注射a托品40μg/kg防止术中心动过缓和呼吸道分泌物增多，连接心电监护；无菌操作从左侧第4或5肋间进胸，结扎左心耳下前降支冠状动脉，关胸缝皮，青mei素腹腔注射抗感ran，呼吸恢复后拔除气管插管，单笼饲养，注意保温。

手术造模图片

病理结果

实验动物的标记

1. 染色法　适用于小动物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上，以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有：3%～5%溶液（黄色）、0.5%中性品红（红色）、2%（咖啡色）。

标记的原则是：先左后右，从上到下。如果动物编号是二位数或三位数，那相应的用二种或三种不同的颜色，不同颜色代表不同位数（个位、十位、百位），标记的原则同上。

2. 挂牌法　常用于大动物。写有编号的金属牌挂在动物的颈上来区分动物。对于猴、狗、猫等动物有时可不做标记，只记录它们的外表特征和毛色即可。

3. 笼子编号　标记在笼子上。

以上只介绍了几种的方法，在使用中可灵活掌握。

睡眠剥夺模型

实验用金属箱直径35 cm， 每箱装1只大鼠。REMSD 各组分别置于直径为6.5 cm的小站台上，对照组大鼠置于直径15 cm的大站台上，周围是水环境,水深3 cm，平台在水面以上1 cm，于平台以上14 cm 处放笼罩，上面放水和食物。水温和室温保持在25 C，每日换水并打扫实验箱。REMSD 组大鼠在小台上屈曲而立，在快动眼睡眠(rapid eye movement sleep， REMS) 时，由于伴随全身肌肉松弛和节律性垂头，大鼠落入水中而惊醒，再爬上站台。造模过程中，每日观察动物的一般活动状况，每周称量动物体重，造模结束后抽取全血制备xue清、称取部分肝组织制备匀浆作生化检测，摘取一些qi官称重，换算成脏器系数，并对肝组织进行组织形态学检查。用此方法自18:00开始连续剥夺大鼠的REMS至相应实验时间点。

 旷场实验( open field test， OFT )

实验装置为高60 cm、 底面边长100 cm、内壁涂黑的无盖方箱，底面平均分为25个小方格，正上方2 m处架一摄像机，镜头对准箱底，实验在安静环境下进行，大鼠置于方箱底面中心，同时进行摄像和计时，3 min 后停止摄像,更换动物后，继续进行实验。2次实验之间清洗箱壁及底面，以免上次动物余留的信息影响下次实验结果。计分方法:通过放像设备，观察大鼠3 min内越过的格子数为水平得分，后肢站立次数为垂直得分，两者之和为OFT总得分。HUVECs的迁移运动也随着PGE2处理浓度的升高不同程度的增强，HUVECs趋化的数量显著升高（P<。REMSD实验前后均进行旷场实验。

心率shi常模型

房室传导阻滞和房室交接区传导常性心律shi常多选用狗、猫，在ma醉开胸暴露心脏的情况下，于距犬心尖部1.5~ 2cm处的左室心肌内注入热生理盐水(80~90C)或95%酒精、25%硫酸10~ 15ml (猫和兔注入4~ 7ml)，引起心肌大片的局部坏死性。也可在狗的房室交接部( 即在左心房下部、心房、下腔静脉和前房室沟三者交汇点的前上方约0. 5cm处)，用注射针头垂直刺入房间隔下部房室结区，缓缓注入95%或无水酒精2~ 5ml,造成核处组织坏死。还可采用豚鼠，自左心耳向左房内注射腺苷5 Hg, ，注后1秒钟左右，即出现典型的II度或II度以上的传导阻滞，较严重时，房室完全停搏，停搏时间与剂里呈平行关系，心率和心律仅在数秒或十几秒即可恢复。此模型重复性好，但传导阻滞持续时间短，不易用其进行观察，如果注射腺苷剂里大，则传导阻滞不易复原。例如诱发动脉粥样硬化时，草食类动物兔需要的胆固醇剂量比人高得多，而且病变部位并不出现在主动脉弓。除豚鼠外，腺苷对其他动物一般不引起传导阻滞。