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MTT检测

MTT 是一种检测细胞存活和生长的方法。2作为标志分子,percoll离心后细胞悬液经FACS分选后获得细胞纯度。其检测原理为活xi胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性 MTT 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒（Formazan）并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。二jia基亚砜（DMSO）能溶解细胞中的甲瓒，用酶联免yi检测仪在 570nm 波长处测定其光吸收值，可间接反映活xi胞数量。

自噬流检测

自噬是调节真核细鹏生长、和能量代谢的重要生物学机制。细胞自噬行使其生物学功能的前提是自噬流的话化。6ml明胶-底物液，约3min，混合液凝固，将培养板取出，置室温5min，将板倒置，用肉眼和低倍放大镜计数所显示出的颜色的斑点。大量证据表明自噬流受损与多种慢性炎性疾病，特别是、神经退行性疾病及组织纤维化的发病密切相关，目前对于自噬液的检别是自噬与其相关疾病研究领域的热点。由于自噬流是一个曲多个步骤组成的动态过程。因此往需要精细的突验才能准确判断自啦流状态。

Q:中的沉淀物对细胞培养有什么影响？

A:（1）细胞生长，我们的试验以及经验表明沉淀物不会影响细胞培养，我们的客户以及其它生产商也证明了这一点。

（2）过滤，如果中出现大量的沉淀物，将很难过滤。大量证据表明自噬流受损与多种慢性炎性疾病，特别是、神经退行性疾病及组织纤维化的发病密切相关，目前对于自噬液的检别是自噬与其相关疾病研究领域的热点。一般说来，因为在生产工序中已经过 100nm 或者 40nm 的过滤处理，并且经过了严格的无菌检测，因此不推荐再过滤用于细胞培养 的。在实验室中没有必要再过滤处理，在大规模的细胞培养中往往将直接加到培养基中一起 过滤。

（3）污染，磷酸钙往往被误认为微生物污染而引起。研究者可能会在中观察到一些絮状的 沉淀，因此就会比较警觉的去做无菌试验，将放在培养箱中培养几天，结果可能会观察到更多的絮状 沉淀，因此就断定被污染了。细胞长满后，先用D-PBS冲洗，倒掉后加胰酶消化(此步时间不宜过长，作者--般不超过五分钟)，按1:5传代。并且当研究者将样品放在倒置显微镜下观察时往往可以看到一些可 以运动的小黑点，因此就更加确认是被污染了。于是，研究者就会花费更多的时间和精力来和生产商 确认，但终确定没有被污染而只是沉淀。为了避免这些问题的发生，我们建议不要直接将放在 培养箱中培养观察是否有菌，而是将加到琼脂板上进行培养以观察是否有细菌生长。另外，也可以进 行革兰氏染色，在油镜下观察，以确认是否有污染。

什么是脂质体？脂质体转染的原理和步骤？

细胞转染的方法主要包括：电穿孔法、显微注射、基因***、磷酸钙共沉淀法、脂质体转染法、多种阳离子物质介导、病毒介导的转染等，理想的细胞转染方法是具有高转染效率、对细胞的毒性作用小等。

一、脂质体 (liome) 转染方法原理

脂质体 (liome) 转染方法原理：脂质体 ((Iiome) 作为体内和体外输送载体的工具，已经研究的十分广泛，用合成的阳离子脂类包裹 DNA，同样可以通过融合而进入细胞。25%胰酶1mMEDTA消化gao丸10min,用胎牛xue清终止消化,用一次40-um孔径的滤器过虑制成单细胞悬液,30%percoll不连续密度梯度法离心富集精原gan细胞,再根椐未分化精原gan细胞表面thy1。使用脂质体将 DNA 带入不同类型的真核细胞，与其它方法相比，有较高的效率和较好的重复性的。

中性脂质体是利用脂质膜包裹 DNA，借助脂质膜将 DNA 导入细胞膜内。25%胰蛋白酶消化并吹打成单个细胞，并把细胞悬浮在10%胎牛的DMEM培养液中备用。带正电的阳离子脂质体，DNA 并没有预先包埋在脂质体中，而是带负电的 DNA 自动结合到带正电的脂质体上，形成 DNA-阳离子脂质体复合物，从而吸附到带负电的细胞膜表面，经过内吞被导入细胞。