神经系统动物模型制备分子生物学检测

动物实验的管理

在建设中要充分的、尽可能的直接体现管理规范，充分考虑人为原因或可能的人为失误、尽量避免人为出现可能因素的存在；在管理上要尽可能避免设施的不足或缺陷和可能出现的漏洞，使设施可能的规范管理或充分发挥设施潜在的可进行的规范管理。

实验动物大、小鼠的采血方法

1、动物实验中剪尾采血：需血量少时可用此方法。将动物固定，显露尾部，将尾尘剪去约5mm，从尾根部向尾端部，血即从断端流出。若用二棉球涂擦尾部或事先将鼠尾浸在45℃水中数分钟，使尾部血管充盈，可采到较多的血，但注意二可致溶血。也可用锋利刀片割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出，采血后，消毒，止血。如将动物取血量可更多些。小鼠每次采血约0.1ml，大鼠约0.4 ml。为了多次反复取血应尽量从鼠尾末端开始。

2、动物实验中摘眼球采血：此法常用于鼠类大量采血。用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球突出，右手用无钩弯镊子或弯止血钳迅速摘除眼球，立即将鼠倒置，头朝下，眼眶内很快流出血液。一般只适用于一次采血。大部动物采血后可以存活，可采另一侧眼球取血。

大鼠后眼框静脉丛取血方法

4、动物实验中颈静脉或颈动脉采血：将鼠，剪去一侧颈部外侧被毛，作颈静脉或颈动脉分离手术，用即可抽出所需血量。也可插入导管，反复采血。

5、断头采血：操作者左手拇指和食指握住鼠颈部，头朝下，用利剪在头颈间1/2处迅速剪动物头部，提起动物，血液即可流入准备好的容器中。

6、心脏采血：将动物，使其仰位固定，剪去胸前区毛，消毒皮肤，在左侧第3—4肋间选择心博强处穿刺，血液借心脏跳动的力量进入。亦可在动物后，切开动物胸腔，直视心脏内抽血或剪破心脏，直接用、吸管等吸血。

阑尾炎动物模型

方法  成年大鼠，后固定，无菌条件下开腹，将阑尾及末端回肠和与阑尾系膜相连的肠段(下称临近肠段)移出腹腔并置壁上。剪开阑尾尖部的阑尾系膜，把阑尾尖部肠内容物挤至阑尾近端肠腔内，距尖部1cm处用1号丝线将阑尾管攀结扎。把结扎了的阑尾尖部摆放在回肠根部和临近肠段之间。用小圆针细丝线(000号)把回肠根部和临近肠段相应位置缝合一针(仅穿透浆肌层)，后将结扎阑尾包埋于其下。再顺续沿末端回肠由远端至近端与临近肠段相应位置紧密缝合1～2针，将阑尾全部包埋在缝合的肠段之下。将外置的全部肠段送入腹腔，两层缝合关腹，无菌纱布包扎伤口，送回笼中饲养观察。或成年家兔，后固定于手术台架上，备皮消毒铺巾后，无菌条件下腹正中切口开腹6cm，寻及盲肠提出阑尾，于阑尾根部以4号丝线紧贴阑尾壁穿过系膜结扎阑尾，随后将阑尾纳回腹腔，逐层关腹。术后，在规定的时间点测定动物体温，行坏死阑尾炎腔内容物细菌培养，包囊或坏死阑尾大小的检测，以及肉眼病理观察和组织形态学改变的镜检。

特点  大鼠术后15d，阑尾呈脓性坏死，外裹一层纤维性包囊，囊内含有大量的细菌，模型成功率高。兔术后6～12h，阑尾充血、增粗、水肿；12～24h时，阑尾肿胀、增粗更为明显，外被脓苔与周围肠管粘连，部分阑尾壁可见斑点状出血灶，腹腔内有脓性渗液出现。与阑尾脓苔粘连的周围肠管亦呈明显的水肿、充血，甚或有阑尾系膜形成。腹腔渗液细菌培养有大肠生长。术后24h，兔体温可升至40℃左右。在整个造模过程中，模型动物神态萎靡，不食不饮，腹部胀满，2～4d内陆续。

记忆再现缺失动物模型怎么制备/

　　1.建模材料动物：老鼠1，药1物：酒精，设备：DS-2老鼠声光单向穿梭箱。

　　2.建立模型的方法是训练以避开黑暗。训练后，在重新测试前30分钟给予小鼠40％酒精0.1 ml/10 g，然后重新测试并在30分钟后测试记忆力。也可以使用皮下1注射，并且在训练前5分钟和训练后24小时向小鼠注射10 ml/kg的40％酒精。

　　避免使用深色方法：在实验过程中，将鼠标脸放回明亮房间的孔中，然后同时启动计时器。动物离开洞穴，进入黑暗的房间，受到电1击，计时自动停止。弹出鼠标，记录下进入暗室所需的时间，然后将其置于暗室中，然后经历电1击。这是潜伏期。 24小时后重复测试，并记录进入暗室的动物数量，潜伏期和5分钟内的电1击次数（错误的次数）。如果您没有在5分钟内进入暗室，则潜伏期为300秒。

　　3.建模原理酒精具有抑制情绪的作用，这可能会影响记忆力。

　　4.建模后的更改。激动时，我在服药后20分钟内出现，此后变得安静，但步态却摇摆不定。暗保护方法表明正常对照组的测试错误数为（0.96±0.58）s，测试错误的潜伏期为（221.2±29.8）s。模型组中的测试错误数为（3.74±0.69），测试错误的潜伏期为（48.7±19.3）s。平台跳跃和水迷宫实验均显示出明显的记忆障碍。